Dziesiątki i tysiące uszkodzeń DNA występują w komórce dziennie. Indukuje zmiany w procesach komórkowych, takie jak replikacja, transkrypcja, a także żywotność komórki. W niektórych przypadkach mutacje spowodowane przez te uszkodzenia DNA mogą prowadzić do szkodliwych chorób, takich jak nowotwory i zespoły związane ze starzeniem się (np. Progeria). Niezależnie od tych uszkodzeń komórka inicjuje wysoce zorganizowany kaskadowy mechanizm naprawy zwany reakcjami uszkodzeń DNA. W systemie komórkowym zidentyfikowano kilka systemów naprawy DNA; są one znane jako naprawa wycięcia podstawy (BER), naprawa niedopasowania (MMR), naprawa wycięcia nukleotydu (NER), naprawa pęknięcia podwójnej nici. Naprawa wycinania nukleotydów jest bardzo wszechstronnym systemem, który rozpoznaje zmiany DNA o dużych rozmiarach i zniekształca helisę i usuwa je. Z drugiej strony naprawa niedopasowania zastępuje błędnie włączone bazy podczas replikacji. Kluczową różnicą między naprawą niedopasowania a naprawą wycinania nukleotydów jest to naprawa wycinania nukleotydów (NER) służy do usuwania dimerów pirymidynowych powstających w wyniku napromieniowania UV i dużych zmian helisy spowodowanych przez addukty chemiczne, podczas gdy system naprawy niedopasowań odgrywa ważną rolę w korygowaniu źle wprowadzonych zasad, które uciekły od enzymów replikacyjnych (polimerazy DNA 1) podczas ponownej replikacji. Oprócz niedopasowanych zasad, białka systemowe MMR mogą również naprawiać pętle insercji / delecji (IDL), które są wynikiem poślizgu polimerazy podczas replikacji powtarzalnych sekwencji DNA.
ZAWARTOŚĆ
1. Przegląd i kluczowa różnica
2. Co to jest naprawa niedopasowania
3. Co to jest naprawa wycinania nukleotydów
4. Porównanie obok siebie - naprawa niedopasowania vs naprawa wycinania nukleotydów
5. Podsumowanie
Najbardziej wyróżniającą się cechą naprawy wycinania nukleotydów jest to, że naprawia zmodyfikowane uszkodzenia nukleotydów spowodowane znacznymi zniekształceniami podwójnej helisy DNA. Jest obserwowany u prawie wszystkich organizmów, które były badane do tej pory. Uvr A, Uvr B, Uvr C (eksukleazy) Uvr D (helikaza) to najbardziej znane enzymy zaangażowane w NER, które wyzwalają naprawę DNA w modelowym organizmie Ecoli. Kompleks enzymatyczny z wieloma podjednostkami Uvr ABC wytwarza polipeptydy Uvr A, Uvr B, Uvr C. Geny kodowane dla wyżej wspomnianych polipeptydów to: uvr A, uvr B, uvr C. Enzymy Uvr A i B zbiorczo rozpoznają zniekształcenie wywołane uszkodzeniem, które jest spowodowane podwójną helisą DNA, taką jak dimmery pirymidynowe z powodu napromieniowania UV. Uvr A jest enzymem ATPazy i jest to reakcja autokatalityczna. Następnie Uvr A opuszcza DNA, podczas gdy kompleks Uvr BC (aktywna nukleaza) rozszczepia DNA po obu stronach uszkodzenia katalizowanego przez ATP. Innym białkiem zwanym Uvr D kodowanym przez gen uvrD jest enzym helikaza II odwijający DNA powstałe w wyniku uwolnienia jednoniciowego uszkodzonego segmentu DNA. Pozostawia to lukę w helisie DNA. Po wycięciu uszkodzonego segmentu w nici DNA pozostaje 12-13 nukleotydowa przerwa. Jest to wypełniane przez enzym I polimerazy DNA, a nick jest uszczelniany przez ligazę DNA. ATP jest wymagany na trzech etapach tej reakcji. Mechanizm NER można również zidentyfikować u ludzi podobnych do ssaków. U ludzi stan skóry zwany Xeroderma pigmentosum jest spowodowany dimerami DNA wywołanymi promieniowaniem UV. Geny XPA, XPB, XPC, XPD, XPE, XPF i XPG wytwarzają białka zastępujące uszkodzenie DNA. Białka genów XPA, XPC, XPE, XPF i XPG mają aktywność nukleazy. Z drugiej strony białka genów XPB i XPD wykazują aktywność helikazy analogiczną do Uvr D w E coli.
Rycina 01: Naprawa wycięcia nukleotydu
System naprawy niedopasowania jest inicjowany podczas syntezy DNA. Nawet z funkcjonalną podjednostką € polimeraza DNA III umożliwia włączenie niewłaściwego nukleotydu do syntezy co 108 pary zasad. Niedopasowane białka naprawcze rozpoznają ten nukleotyd, wycinają go i zastępują go właściwym nukleotydem odpowiedzialnym za końcowy stopień dokładności. Metylacja DNA jest kluczowa dla białek MMR do rozpoznania nici macierzystej z nowo zsyntetyzowanej nici. Metylacja nukleotydu adeniny (A) w motywie GATC nowo zsyntetyzowanej nici jest nieco opóźniona. Z drugiej strony natywny nić nukleotyd adeninowy w motywie GATC już się metylował. Białka MMR rozpoznają nowo zsyntetyzowaną nić na podstawie tej różnicy od nici macierzystej i rozpoczynają naprawę niedopasowania w nowo zsyntetyzowanej nici, zanim ulegnie ona metylacji. Białka MMR kierują swoją aktywnością naprawczą do wycinania niewłaściwego nukleotydu, zanim nowo replikowana nić DNA ulegnie metylacji. Enzymy Mut H, Mut L i Mut S kodowane przez geny mut H, mut L, mut S katalizują te reakcje w Ecoli. Białko Mut S rozpoznaje siedem z ośmiu możliwych par zasad niedopasowania oprócz C: C i wiąże się w miejscu niedopasowania w dupleksowym DNA. Z powiązanymi ATP, Mut L i Mut S dołączają do kompleksu później. Kompleks przenosi kilka tysięcy par zasad, aż znajdzie hemimetylowany motyw GATC. Aktywność nieaktywnej nukleazy białka Mut H jest aktywowana, gdy znajdzie hemimetylowany motyw GATC. Odcina niemetylowaną nić DNA pozostawiając nick 5 'przy nukleotydu G niemetylowanego motywu GATC (nowo zsyntetyzowana nić DNA). Następnie ta sama nić po drugiej stronie niedopasowania jest nacinana przez Mut H. W pozostałych etapach, zbiorowe działania Uvr D białka helikazy, Mut U, SSB i eksonukleazy I wycinają nieprawidłowy nukleotyd w jednoniciowym DNA Luka, która powstaje podczas wycinania, jest wypełniana przez polimerazę DNA III i uszczelniona przez ligazę. Podobny system można zidentyfikować u myszy i ludzi. Mutacja ludzkiego hMLH1, hMSH1 i hMSH2 bierze udział w dziedzicznym raku jelita grubego niepolipozowym, który rozregulowuje podział komórkowy komórek okrężnicy.
Rysunek 02: Naprawa niedopasowania
Naprawa niedopasowania a naprawa wycięcia nukleotydu | |
System naprawy niezgodności występuje podczas ponownej replikacji. | Jest to zaangażowane w usuwanie dimerów pirymidynowych z powodu napromieniowania UV i innych zmian DNA spowodowanych adduktem chemicznym. |
Enzymy | |
Katalizuje go Mut S, Mut L, Mut H, Uvr D, SSB i egzonukleaza I.. | Jest katalizowany przez enzymy Uvr A, Uvr B, Uvr C, UvrD. |
Metylacja | |
Zasadnicze znaczenie ma zainicjowanie reakcji. | Metylacja DNA nie jest wymagana do rozpoczęcia reakcji. |
Działanie enzymów | |
Mut H jest endonukleazą. | Uvr B i Uvr C są egzonukleazami. |
Okazja | |
Dzieje się tak szczególnie podczas replikacji. | Dzieje się tak, gdy jest narażony na działanie UV lub mutagenów chemicznych, a nie podczas replikacji |
Ochrona | |
Jest wysoce konserwowany | Nie jest wysoce konserwowany. |
Wypełnienie luki | |
Odbywa się to za pomocą polimerazy DNA III. | Odbywa się to za pomocą polimerazy DNA I. |
Naprawa niedopasowania (MMR) i naprawa wycięcia nukleotydu (NER) to dwa mechanizmy, które mają miejsce w komórce w celu naprawy uszkodzeń i zniekształceń DNA spowodowanych przez różne czynniki. Są one łącznie nazywane mechanizmami naprawy DNA. Naprawa wycinania nukleotydu naprawia zmodyfikowane uszkodzenia nukleotydów, zazwyczaj te znaczące uszkodzenia podwójnej helisy DNA, które występują w wyniku ekspozycji na promieniowanie UV i addukty chemiczne. Niedopasowane białka naprawcze rozpoznają niewłaściwy nukleotyd, wycinają go i zastępują prawidłowym nukleotydem. Proces ten odpowiada za końcowy stopień dokładności podczas replikacji.
Odniesienie:
1. Cooper, Geoffrey M. „Naprawa DNA”. The Cell: A Molecular Approach. 2. edycja National Library of Medicine, 01 stycznia 1970. Web. 09 marca 2017.
2. „Mechanizmy i funkcje naprawy niedopasowania DNA”. Badania komórek. U.S. National Library of Medicine, n.d. Sieć. 09 marca 2017.
Zdjęcie dzięki uprzejmości:
1. „Nucleotide Excision Repair-journal.pbio.0040203.g001” Autor: Jill O. Fuss, Priscilla K. Cooper - (CC BY 2.5) przez Commons Wikimedia
2. „Naprawa niedopasowania DNA Ecoli” Autor: Kenji Fukui - (CC BY 4.0) przez Commons Wikimedia